背景与研究场景
钙离子（Ca²⁺）是参与多种生理现象的第二信使。与细胞外液中较高的 Ca²⁺ 浓度（2 mM）相比，细胞将胞质 Ca²⁺ 维持在 nM 浓度。然而，在外部刺激存在时，胞质 Ca²⁺ 浓度通过质膜上钙通道的激活而增加约 100 倍，并触发多种生理反应。为阐明这些钙通道的生理意义，京都大学分子生物学实验室在分子、细胞及生理层面研究电压依赖性钙通道（VDCC）和瞬时受体电位（TRP）通道。
平滑肌来源的 A7r5 细胞由荧光蛋白融合的 PH 结构域蛋白照明
基于双视图的 FRET 测量构建了定制 MATLAB 软件。
技术挑战
该研究的主要挑战是能够同时通过膜片钳测量离子通道活性，以及通过脂质生物传感器的 FRET 动力学进行测量。精密的成像解决方案至关重要。
成像方案与成果
Photometrics Evolve® 512 EMCCD 相机和 DualView 多通道系统均经过演示。在与资深成像专家讨论后，团队选择这些相机作为支持其研究的成像解决方案。自实施这些相机以来，他们发现研究取得了显著改善，能够以如此高的速度和低噪声捕捉图像。
团队通过结合膜片钳，同时定量测量荧光变化所反映的脂质动力学和离子通道的离子流。荧光检测完全依赖于 Evolve 512。Mori 博士表示：“我们选择这款相机是因为其高灵敏度、高时间分辨率和低电噪声。”因此，膜脂成分（PIP₂）与 Ca²⁺ 和 Na⁺ 流清晰同步以激活细胞。Mori 博士总结道：“Photometrics 的科学成像解决方案使我们的电生理学和 FRET 研究应用取得了革命性进展。”
References
Mori 博士及其团队最近发表的研究可在 PubMed.gov 在线获取：http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24470487